自然杀伤细胞(Natural Killer Cells,NK cells)作为-先天免疫系统的核心效应细胞,凭借无需预敏即可杀伤靶细胞的特性,在肿瘤免疫、细胞治疗与抗体药物评价等研究中扮演着日益重要的角色。然而,外周血中NK细胞占单个核细胞的比例有限,单次样本可获得的NK细胞数量往往难以支撑不同效靶比、多靶细胞及多条件重复的实验设计。NK细胞体外扩增(In vitro NK cell expansion)正是解决“数量从何而来”的关键环节。
IPHASE作为体外研究生物试剂引-领者,将在本文系统梳理NK细胞体外扩增的定义、原理、流程、应用场景与常见问题,聚焦“如何兼顾数量与功能”这一核心命题,以满足下游实验对效应细胞的大量需求。
01 NK细胞扩增是什么
NK细胞体外扩增(In vitro NK Cell Expansion)是指在体外通过培养基、生长因子及滋养细胞等提供营养和刺激信号,增加NK细胞数量的过程。分选侧重提高纯度,扩增侧重增加数量,研究中可-先分选富集,再进行扩增。由于外周血中NK细胞占比有限且存在供者差异,体外扩增可为肿瘤杀伤实验、CAR-NK功能研究等提供足量效应细胞,满足不同效靶比、多条件及重复实验的需求。

然而,在NK细胞体外扩增(In vitro NK cell expansion)实践中,研究者常面临以下痛点:
• 起始样本NK细胞数量有限:外周血中NK细胞占比有限,单次样本可获得的NK细胞绝对数量少,难以直接支撑大规模实验。
• 供者差异:不同供者的NK细胞比例与增殖能力差异明显,直接影响扩增结果的一致性与可重复性。
• 培养中活率变化:体外长期培养过程中,细胞活率可能逐渐下降,需持续监测并优化培养条件。
• 非目标细胞混杂:PBMC中的T、B、单核细胞等非目标细胞若未去除,会混杂于体系中,干扰纯度和功能评价。
• 数量与功能的平衡:过度扩增可能导致NK细胞耗竭或功能下降,扩增数量与功能维持之间需要精细平衡,这正是本文关注的核心问题。
02 原理与系列产品组成
阔增原理
NK细胞体外扩增(In vitro NK cell expansion)依赖“培养环境—生长信号—支持性刺激”三类要素的配合:
• 基础培养基:提供稳定的培养环境与基础营养,维持pH缓冲、渗透压、无机盐、氨基酸、维生素与能量底物,保障细胞基础代谢与存活。
• 生长因子:参与存活与增殖调控,IL-2、IL-15、IL-21等细胞因子通过相应受体及胞内信号通路(如JAK/STAT、PI3K/AKT)促进NK细胞增殖、抗凋亡与功能成熟;细胞因子的种类、组合与加入时机直接影响扩增效率与终末功能。
• 滋养细胞:提供支持性刺激,以K562为基础的滋养细胞通过膜结合配体与共刺激分子(如膜结合IL-21、膜结合IL-15等)为NK细胞提供持续增殖与功能维持信号,是K562基础扩增体系的重要支撑[1]。
三类组分在扩增体系中分工配合:基础培养基提供生存环境,生长因子驱动增殖与存活信号,滋养细胞补充膜结合形式的共刺激刺激。三者协同,才能在实现数量放大的同时尽量维持NK细胞的纯度与功能。
NK细胞扩增试剂盒产品组成
| 产品货号 | 产品名称 | 主要作用 |
| 075002.12 | 人NK细胞扩增基础培养基 | 提供NK细胞体外扩增所需的稳定培养环境与基础营养 |
| 075002.13 | 人NK细胞扩增生长因子 | 提供增殖与存活相关的生长信号,参与扩增调控 |
| 075002.11 | 人K562滋养细胞 | 提供支持性刺激,促进NK细胞持续扩增与功能维持 |
注:各产品具体组分、规格与操作要求,请以IPHASE现行产品说明书为准。

03 扩增流程与关键因素
起始细胞状态
起始细胞的质量直接决定扩增结果的稳定性,需重点关注以下因素:细胞来源(如人外周血PBMC,可经NK细胞分选富集)、样本状态(新鲜或冻存PBMC均可作为常见起始选择,适用性以说明书为准)、初始数量与纯度(起始NK纯度越高,体系中非目标细胞干扰越小,扩增结果越稳定)。
NK细胞体外培养扩增流程
其整体工作流可概括为:细胞准备→启动培养→扩增与补液→收获→纯度与功能评价。

培养中的关注点
• 细胞密度:起始接种密度与扩增中的密度控制影响增殖速率与培养状态:密度过高易营养耗竭,过低则增殖缓慢,需按说明书进行管理。
• 培养状态:定期镜下观察细胞形态、聚团情况及培养基颜色变化,及时补液或换液。
• 组分添加:NK细胞扩增生长因子等组分按说明书规定的浓度与时机加入,避免随意增减影响结果一致性。
• 滋养细胞使用:K562滋养细胞需按要求处理后使用,并按说明书比例与效应细胞共培养,严禁未经处理直接使用。
收获与下游衔接
收获时机与方式应根据下游用途安排:用于肿瘤杀伤实验时,收获后需评估扩增后NK细胞的杀伤活性;用于CAR-NK研究时,需衔接基因修饰与功能验证流程。收获后建议完成细胞计数、活率、纯度及功能相关检测,以确认细胞质量满足下游实验需求。

不同培养时间点的NK细胞表型检测结果

不同供者冻存脐血CBMC培养过程中的细胞扩增、NK细胞纯度及活率变化
04 NK扩增系列可以用于干什么
肿瘤细胞体外杀伤研究
为不同靶细胞、效靶比、处理条件与重复实验准备效应细胞。通过扩增获得足量NK细胞后,开展细胞毒性实验评价杀伤功能。需要强调的是,扩增主要解决数量问题,扩增后NK细胞的杀伤活性仍需单独检测,综合评价扩增体系的细胞数量与功能。


NK细胞对K562靶细胞的体外杀伤结果
CAR-NK相关研发
在CGT领域,体外扩增培养可用于获得足量NK细胞,支撑CAR-NK等细胞治疗相关研究。基因修饰前后均可能涉及扩增,具体次序由工艺决定;CAR表达情况及修饰后细胞功能需另行验证。CAR-NK应用的背景可参考文献[3]。
NK扩增工艺优化
用于不同培养组分与培养条件的比较研究,综合评价细胞数量、纯度、活率及功能。例如不同细胞因子组合、不同滋养细胞体系、不同培养条件等的对比优化,可参考K562基础扩增体系[1]与细胞因子培养策略[2]。
拓展应用:ADCC及NK细胞机制研究
可用于抗体依赖性细胞介导的细胞毒性(ADCC)、受体表型或功能调控研究。开展ADCC研究时,需评价扩增后NK细胞的CD16表达及相应功能,以确认扩增体系是否支持该类研究的开展。
05 常见FAQ
Q:NK细胞扩增试剂盒与单独的NK细胞扩增基础培养基有什么区别?套装包含哪些组分?
A:NK细胞扩增试剂盒通常将基础培养基、生长因子等组分按体系整合为相对完整的组合,便于直接开展扩增;单独的NK细胞扩增基础培养基只提供培养环境,需自行搭配NK细胞扩增生长因子等组分。套装具体包含哪些组分,以现行产品说明书为准。
Q:可以直接从PBMC启动扩增,还是需要分选NK细胞?
A:两种方式均可作为研究思路:直接从PBMC启动扩增较为简便,但非目标细胞混杂可能影响纯度与扩增效率;先经NK细胞分选富集再扩增,通常可获得更高纯度、更稳定的结果。具体适用性请结合实验设计并按说明书确认。
Q:新鲜与冻存PBMC是否都适用?是否验证过脐带血来源细胞?
A:新鲜与冻存PBMC是NK细胞扩增中常见的起始样本选择,从两类样本中分选得到的NK细胞均适用于IPHASE 人NK细胞扩增试剂盒。脐带血来源细胞的验证情况,请以IPHASE现行说明书及技术资料为准。
Q:该体系是否需要K562滋养细胞?滋养细胞使用前是否需要处理?
A:K562滋养细胞可为NK细胞提供支持性刺激,是K562基础扩增体系的组成部分,使用方法及比例依说明书与实验目的而定。
Q:是否需要额外添加血清或细胞因子?各组分怎样配合使用?
A:是否需要额外添加血清或细胞因子,取决于所采用的体系与说明书要求。请严格按说明书规定的组分、浓度与添加时机配合使用,避免随意增减,以保证实验结果的一致性。
Q:扩增周期如何确定?扩增倍数、纯度和活率分别如何计算?
A:扩增周期依说明书推荐及实验需求确定。扩增倍数=收获细胞总数÷起始细胞总数;纯度=NK细胞占收获细胞总数的比例(通常以流式检测CD3⁻CD56⁺等表型);活率=活细胞占收获细胞总数的比例(如台盼蓝染色或流式活率染色)。
Q:为什么扩增后的NK细胞纯度提高,但杀伤效果仍需单独检测?
A:扩增主要解决“数量”问题,纯度反映目标细胞占比;而杀伤功能受受体表达、细胞成熟状态、细胞因子暴露等多种因素影响。数量与纯度提高不代表功能必然保留,因此需单独进行杀伤活性等功能检测,综合评价扩增体系的细胞质量。
Q:用于CGT领域的CAR-NK或ADCC研究时,需要补充哪些适配性与功能验证?
A:用于CAR-NK研究时,需验证CAR表达、转导效率及修饰后细胞的功能;用于ADCC研究时,需评价扩增后CD16表达及相应杀伤功能。具体验证内容请结合研究目标,并参照相关文献与产品说明设计。
Q:各组分如何运输与保存?培养体系的补液和添加要求是什么?
A:各组分的运输与保存条件(温度、避光等)以产品说明书为准;培养体系需按说明书进行补液与组分添加,控制细胞密度与培养状态。具体操作请严格遵循IPHASE现行产品说明书。
参考文献
[1] Denman CJ, Senyukov VV, Somanchi SS, et al. Membrane-Bound IL-21 Promotes Sustained Ex Vivo Proliferation of Human Natural Killer Cells. PLoS ONE. 2012;7(1):e30264. DOI: 10.1371/journal.pone.0030264. 用于K562基础扩增体系机制与供者差异背景。
[2] Wagner J, Pfannenstiel V, Waldmann A, et al. A Two-Phase Expansion Protocol Combining Interleukin (IL)-15 and IL-21 Improves Natural Killer Cell Proliferation and Cytotoxicity against Rhabdomyosarcoma. Frontiers in Immunology. 2017;8:676. DOI: 10.3389/fimmu.2017.00676. 用于细胞因子培养策略及扩增与功能并行评价背景。
[3] Liu E, Marin D, Banerjee P, et al. Use of CAR-Transduced Natural Killer Cells in CD19-Positive Lymphoid Tumors. New England Journal of Medicine. 2020;382(6):545–553. DOI: 10.1056/NEJMoa1910607. 用于CAR-NK应用背景,不作为本公司扩增产品效果的证据。
本文未标注图均为AI设计
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